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NCI-H446-Luc(人小细胞肺癌荧光素酶标记细胞)

货号:HY-A559

NCI-H446-Luc细胞(人小细胞肺癌荧光素酶标记细胞)由NCI-H446经慢病毒稳定转染Luc基因、带嘌呤霉素抗性(可1-5µg/mL梯度筛选维持),宿主源自61岁男性SCLC患者胸膜液,表达NSE及脑型肌酸激酶、c-myc扩增20倍,贴壁伴少量悬浮生长,STR鉴定正确、无支原体,IMDM+10%FBS培养,适用于SCLC活体成像、MYC靶向药物及免疫治疗体内外评价,CellFactory现货供应。

一、基本信息

1. 产品编号:HY-A559

2. 产品名称:NCI-H446-Luc(人小细胞肺癌荧光素酶标记细胞)

3. 英文名称:NCI-H446-Luc Human Small Cell Lung Cancer Luciferase Reporter Cell Line

4. 细胞别称:H446-Luc、NCI-H446-LUC、NCI-H446荧光素酶标记细胞

5. 种属来源:人

6. 年龄性别:61岁;男性

7. 组织来源:肺(胸膜转移灶/胸膜渗出癌)

8. 疾病背景:小细胞肺癌(SCLC)

9. 细胞类型:荧光素酶报告基因稳定细胞系

10. 宿主细胞:NCI-H446

11. 细胞形态:上皮细胞样,贴壁生长(伴少量悬浮)

12. 生长特性:贴壁生长+少量悬浮(半贴壁)

13. 细胞规格:1×10⁶cells/T25培养瓶或1mL冻存管(含量 >1×10⁶cells)

14. 传代代数:10代以内

15. RRID:CVCL_1565(宿主细胞 NCI-H446,建议按引种证书核对)

16. 保藏机构:ATCC; HTB-171(宿主细胞 NCI-H446)

17. 抗性标记:嘌呤霉素(Puromycin)抗性,建议筛选梯度 1→5 µg/mL

18. 生物安全等级:BSL-1

19. 质量检测:STR 鉴定正确,支原体检测阴性

二、细胞特征

1. 背景介绍:NCI-H446-Luc 由经典人小细胞肺癌细胞系 NCI-H446 经慢病毒稳定转染 Luc 基因构建。宿主 NCI-H446 于 1982 年从一位 61 岁白人男性肺小细胞癌患者的胸膜液中分离——原发肿瘤形态不典型,该细胞系是 SCLC 的生化与形态学变体:表达神经元特异性烯醇化酶(NSE)与肌酸激酶脑同工酶(BB-CK),无可检测水平的左旋多巴脱羧酶、铃蟾肽、加压素、催产素或胃泌素释放肽;C-myc DNA 扩增约 20 倍、c-myc mRNA 升高 15 倍;裸鼠体内可形成具有非典型小细胞肺癌组织学的可移植肿瘤。

2. MYC 扩增背景:c-myc 扩增约 20 倍——是 MYC 靶向治疗与 SCLC 分子机制研究的特色模型。

3. 生长特性:上皮样贴壁生长伴少量悬浮;贴壁不牢,传代时需同时收集悬浮细胞与贴壁细胞(PBS 润洗液也需回收)。

三、培养条件

1. 基础培养基:IMDM

2. 培养基配方:89% IMDM + 10% 优质胎牛血清 + 1% 青霉素-链霉素双抗

3. 培养环境:气相:95% 空气 + 5% 二氧化碳;温度:37℃;湿度 70%–80%

4. 筛选维持:可加入嘌呤霉素梯度筛选维持荧光强度(1 µg/mL 起步,逐步增至 5 µg/mL;筛选流程详见培养方法)

5. 推荐传代比例:首次 1:2,后续 1:2–1:5

6. 推荐换液频率:2–3 次/周

7. 消化液类型:0.25% 胰蛋白酶-0.53 mM EDTA(消化 1–2 分钟)

8. 冻存条件:90% FBS + 10% DMSO(现用现配)或无血清冻存液,液氮储存

9. 倍增时间:约24–48小时

四、产品应用

1. SCLC 活体成像:小细胞肺癌原位/皮下/转移模型的实时无创监测

2. MYC 靶向研究:c-myc 扩增背景下的靶向药物评价

3. 免疫治疗研究:SCLC 肿瘤疫苗、免疫检查点抑制剂体内疗效评价

4. 药物筛选:化疗(依托泊苷/顺铂)及新型化合物的体内外活性评价

5. 神经内分泌肿瘤研究:NSE、脑型肌酸激酶等标志物研究

五、产品优势

1. 宿主经典:1982 年建系,ATCC HTB-171 保藏,SCLC 研究引用广泛

2. 分子明确:c-myc 扩增 20 倍+SCLC 神经内分泌标志物齐全

3. 筛选方案成熟:嘌呤霉素 1→5 µg/mL 梯度筛选流程标准化,可长期维持荧光强度

4. 质量可靠:STR 鉴定正确,支原体检测阴性

六、培养方法

1. 细胞复苏:37℃水浴快速摇晃融化冻存管(管口置于水面之上防污染),加入含 4–6 mL 完全培养基的离心管混匀,1000 rpm离心3–5分钟,弃上清,完全培养基重悬后转入含 6–8 mL 完全培养基的培养瓶,37℃ 培养过夜,第二天镜检观察。注意:运输用灌液培养基不能再用于培养细胞,请换用新配制的完全培养基;收到后第一次传代建议 T25 瓶 1:2 传代。

2. 细胞传代:细胞密度达 70–90% 时传代——先收集培养瓶中的悬浮细胞至离心管;用无钙镁 PBS 润洗细胞 1–2 次(细胞贴壁不牢,PBS 润洗后会脱落,PBS 也需回收到离心管);加入 0.25% 胰蛋白酶-0.53 mM EDTA(T25 瓶 1–2 mL)37℃ 消化 1–2 分钟,镜下见大部分细胞变圆脱落即加含血清培养基终止;将悬浮细胞、PBS 清洗液中的细胞与消化下来的贴壁细胞合并,1000 rpm离心5分钟,重悬后按 1:2(首次)或 1:2–1:5(后续)接种新瓶,补足完全培养基。

3. 荧光维持筛选:细胞传代后 Luc 荧光会逐渐减弱,如需维持可用嘌呤霉素再次筛选——建议收到细胞后至少传 3 代、冻存留种后再筛选;初次用 1 µg/mL 嘌呤霉素完全培养基维持,无细胞漂浮或漂浮较少时换 2 µg/mL,以此类推至最高 5 µg/mL;筛选中漂浮细胞大于 60% 时停止筛选,换正常培养基培养至细胞密度约 80% 后再以同浓度继续;5 µg/mL 下细胞正常增殖即可停止筛选,换无药完全培养基正常培养。

4. 细胞冻存:建议培养前 3 代冻存种子批;按传代方法收集细胞,90% 血清 + 10% DMSO(现用现配)或无血清冻存液重悬至 1×10⁶–1×10⁷cells/mL,每管 1 mL,程序降温盒 -80℃ 过夜后转液氮长期保存。

注意事项:本细胞贴壁不牢、伴少量悬浮,传代时务必同时收集悬浮细胞与 PBS 润洗液中的细胞,避免细胞丢失;运输用灌液培养基不能再用于培养,请更换新配完全培养基;收到细胞后请拍照留存(4×/5× 确认状态,10×/20× 各 2–3 张+培养瓶外观照),作为售后依据;本产品仅供科研使用。

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